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transwell遷移/侵襲實驗

來源:萬物生物   發(fā)布時間:2021-11-02

transwell遷移/侵襲實驗


細胞遷移與侵襲實驗將Transwell小室放入培養(yǎng)板中,小室內(nèi)稱上室,培養(yǎng)板內(nèi)稱下室,上下層培養(yǎng)液以聚碳酸酯膜相隔,將研究的細胞種在上室內(nèi),由于聚碳酸酯膜有通透性,下層培養(yǎng)液中的成分可以影響到上室內(nèi)的細胞,應用不同孔徑和經(jīng)過不同處理的聚碳酸酯膜,就可以進行共培養(yǎng)、細胞趨化、細胞遷移、細胞侵襲等多種方面的研究。 


遷移實驗(cell migration assay

實驗步驟: 

1)所有細胞培養(yǎng)試劑和Transwell chamber 放在37℃溫育; 

2)待測細胞培養(yǎng)至對數(shù)生長期,消化細胞,用PBS和無血清培養(yǎng)基先后洗滌一次,用無血清培養(yǎng)基懸浮細胞,計數(shù),調(diào)整濃度為2×105 /ml; 

3)在下室(即24孔板底部)加入600800μl 10%血清的培養(yǎng)基,上室加入100150μl細胞懸液,繼續(xù)在孵箱培養(yǎng)24小時; 

4)用鑷子小心取出chamber,吸干上室液體,移到預先加入約800μl甲醇的孔中,室溫固定30分鐘; 

5)取出chamber,吸干上室固定液,移到預先加入約800μl Giemsa染液的孔中,室溫染色1530分鐘;

6)輕輕用清水沖洗浸泡數(shù)次,取出chamber,吸去上室液體,用濕棉棒小心擦去上室底部膜表面上的細胞;

7)用小鑷子小心揭下膜,底面朝上晾干,移至載玻片上用中性樹膠封片; 

8)顯微鏡下取9個隨機視野計數(shù),統(tǒng)計結(jié)果

注意事項 

1)根據(jù)待測細胞體積大小選擇合適孔徑的chamber。常用的為8.0-μm孔徑(如AGS細胞),如果細胞體積較大可以考慮用10-μm孔徑; 

2)根據(jù)待測細胞的遷移能力強弱調(diào)整細胞數(shù)和遷移時間。常規(guī)24-well chamber接種細胞數(shù)約為2≈5×104/well,遷移時間12≈36小時; 

3)由于Corning公司的24-Transwell內(nèi)含12個獨立的chamber,為了避免操作污染,每次實驗可預先另準備一塊24孔普通培養(yǎng)板(Corning); 

4)如果細胞遷移能力較弱,下室液體可用3T3細胞無血清培養(yǎng)24小時獲得的上清加50μg/ml FNFibronectin),具體可查閱相關文獻; 

5)細胞懸液加入膜中央,盡量保證液面水平; 

6)固定染色擦洗時動作小心,避免擦去膜底面的細胞。但一定要充分擦凈膜表面上未遷移的細胞,以免影響讀數(shù)。尤其是膜周邊上可用細牙簽或小鑷子纏上濕棉花擦洗,但要小心避免將膜戳破; 

7Chamber和膜上都無法標記,操作時應小心避免混淆實驗組和對照組; 

8)充分晾干,避免殘留水分導致鏡下聚焦不一致。


細胞侵襲實驗 cell invasion assay 

操作步驟 

1Matrigel4℃過夜融化; 

2)用4℃預冷的無血清培養(yǎng)基稀釋Matrigel至終濃度1mg/ml,冰上操作; 

3)在chamber上室底部中央垂直加入100μl稀釋后的Matrigel,37℃溫育45小時使其干成膠狀; 

4)后續(xù)步驟同遷移實驗(1-8)。 

注意事項 

1Matrigel在過高或過低的溫度均易凝固,因此操作所需槍頭和離心管應提前在4℃預冷; 

2)鋪膠時保證液面水平,膠的厚度均勻一致,切勿產(chǎn)生氣泡; 

3)其他注意事項同遷移試驗。


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